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遠(yuǎn)慕新聞:為什么 PCR 跑不出滿意的結(jié)果?
點(diǎn)擊次數(shù):1055 更新時(shí)間:2019-12-02

PCR 是一個(gè)坑,坑里埋了好多研究僧……

PCR 是眾位「研究僧」日常實(shí)驗(yàn)中常用的技術(shù),可謂是「研究盛宴」中的一道「小菜」??梢灿胁簧偻从?,這道菜不hao吃,一不小心就「小河里翻船」。

那么,我們?cè)撊绾伟堰@道菜「吃好」、跳出這個(gè)「坑」呢?
 

諸位看官莫急,待我送君「三大fa寶」。

一、確保 RNA 樣本合格

常見的 RNA 提取方法有 TRIzol 法、吸附法,這兩個(gè)方法各有所長(zhǎng),但都不能保證提取的 RNA 樣本一定合格。

因而,提取完成后應(yīng)測(cè)定 RNA 的濃度及吸光度。通常,在 260,280,230 nm 處分別測(cè)定其吸光度(A260、A280、A230)并計(jì)算其比值(A260 /A280,A260 /A230)。

那么,這幾個(gè)數(shù)值及其比值分別有何意義?
 

A260 為核酸的吸光度,A280 為蛋白質(zhì)的吸光度,A230 為其他雜質(zhì)(多糖等)的吸光度。純 DNA 的 A260 /A280 為 1.8,純 RNA 的 A260 /A280 為 2.0。

如果 OD 比值不在范圍內(nèi)該如何解決呢?

再次洗滌樣本!
 

75% 乙醇沉淀 RNA 后重新吸附、洗滌;若采用 TRIzol 法提取 RNA,可直接洗滌兩次。洗滌后離心時(shí)可兩次分別將 EP 管置于不同的方向,便于*洗滌 RNA 樣本。通常洗滌兩次后可使測(cè)得的 OD 值較為理想。

二、 利用「RNAstructure」軟件

引物,是進(jìn)行熒光定量實(shí)驗(yàn)的*條件。其特異性的問(wèn)題可通過(guò)「BLAST」搞定,讓人比較頭痛的是引物可以形成「發(fā)夾結(jié)構(gòu)」或「二聚體」(即在<75℃ 時(shí)出現(xiàn)溶解曲線的峰),影響擴(kuò)增效率,終導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)結(jié)果不可用。

那么,這個(gè)問(wèn)題能否解決呢?
 

有!設(shè)計(jì)引物的時(shí)候用「RNAstructure」預(yù)測(cè)一下引物的二級(jí)結(jié)構(gòu)即可。

那么,這個(gè)軟件要如何使用呢?
 

1. 打開「RNAstructure」,單擊左上角的「new sequence」按鈕:

2. 新建序列文件,會(huì)出現(xiàn)一個(gè)對(duì)話框,輸入待檢測(cè)的引物序列:

3. 單擊「Fold as DNA」,「save changes」,出現(xiàn)新的對(duì)話框后直接點(diǎn)擊「Start」:

4. 無(wú)需更改其他參數(shù),再次點(diǎn)擊「Draw structure」,即可得到目標(biāo)序列的二級(jí)結(jié)構(gòu):

 

  • 若考察引物能否形成發(fā)夾結(jié)構(gòu),則直接檢測(cè) Forward 或 Reverse 引物即可。

  • 若考察引物能否形成二聚體,則把兩條引物一起輸入,視作一條序列進(jìn)行檢測(cè)即可。

在得到二級(jí)結(jié)構(gòu)圖后,只要沒有連續(xù) 4 個(gè)以上的配對(duì)即可;若一條引物長(zhǎng)度為 20 bp,在 18~22 處有連續(xù) 5 個(gè)的堿基配對(duì),則可「手動(dòng)拆解配對(duì)」,即保證引物為兩條鏈時(shí)的配對(duì)不多于 4 個(gè)即可。
 

三、保證擴(kuò)增效率符合要求

有童鞋反映,兩個(gè)同類基因測(cè)試同一批樣本,理論上趨勢(shì)應(yīng)該一致,結(jié)果卻是兩種趨勢(shì),應(yīng)該相信哪個(gè)呢?

不知道各位看官有沒有遇到類似的問(wèn)題?這類問(wèn)題該如何解決呢?

先說(shuō)說(shuō)出現(xiàn)這類問(wèn)題的原因吧:

1. 擴(kuò)增條件非*;

2. 樣本中含有抑制擴(kuò)增的物質(zhì),如乙醇。

一對(duì)引物有其特定的 Tm 值,但 Tm 值時(shí)未必是其*擴(kuò)增溫度。溫度過(guò)高時(shí),擴(kuò)增效率過(guò)低,差異部分的目的基因不能被擴(kuò)增,導(dǎo)致「假陰性」結(jié)果的出現(xiàn)。

那么,如何確定擴(kuò)增效率是否滿足要求呢?

通常,拿到新引物后應(yīng)從 Tm- 5℃ 尋找其適宜的擴(kuò)增溫度,在某溫度起為特異性擴(kuò)增。

然后,在特異性擴(kuò)增的溫度下檢測(cè)擴(kuò)增效率:將 cDNA 梯度稀釋(一般為 2×),測(cè)試稀釋后的樣本 Ct 值差異是否為 1 左右。

  • 若差值為 1,則擴(kuò)增效率良好,可進(jìn)行正式實(shí)驗(yàn)。

  • 若在特異性擴(kuò)增的溫度范圍內(nèi)不能使 Ct 值差異為 1,則需考慮重新設(shè)計(jì)引物。

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