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使用Polybrene助感染試劑,細胞狀態(tài)卻變差了,原因是什么?
點擊次數(shù):14223 更新時間:2019-02-11

     慢病毒是當(dāng)前熱門的基因操作工具,其感染譜廣,可有效地感染腫瘤細胞、神經(jīng)元細胞、心肌細胞、內(nèi)皮細胞、干細胞等多種類型的細胞,從而為基因功能的研究提供了更強有力的工具。然而仍有一部分細胞,尤其是原代細胞和懸浮細胞由于細胞特性,很難獲得的感染效率。為了提高細胞的感染效率,我們常常選擇多加病毒或使用Polybrene等助感染試劑,然而細胞狀態(tài)卻變差了,且增加感染效率并沒有達到理解的效果,這是什么原因呢?
 
一、對慢病毒感染出現(xiàn)的問題進行原因分析

1. 細胞狀態(tài)變差——細胞毒性 

 

  • 雜質(zhì)病毒溶液中殘留的雜質(zhì)蛋白、內(nèi)毒素及宿主細胞DNA等是造成細胞毒性的主要因素。特別對于某些外源刺激敏感的細胞來說,嚴重時將導(dǎo)致細胞死亡。這是病毒感染細胞后,狀態(tài)差異的主要原因。
  • 過度感染:外源基因過度表達,會導(dǎo)致目的細胞本身正常新陳代謝失衡。這是有些細胞過感會死亡的主要原因。



2. 病毒加了不少,效果不理想,如何增加感染效率——了解影響慢病毒感染效率的因素
 

  • 細胞膜的流動性
  • 細胞膜表面受體的表達豐度
  • 病毒與細胞的接觸面積和接觸幾率
  • 細胞膜與病毒外殼蛋白電荷的多少

 
二、如何有針對性地增加慢病毒感染效率

了解了影響細胞狀態(tài)和感染效率的原因后,我們就可以有針對性的進行調(diào)整。吉凱基因從大量的文獻及實際操作中總結(jié)了增加感染效率的方法,可根據(jù)不同的實驗需求選擇性的使用:
 
1.  使用高滴度高純度的慢病毒,可以減少病毒中的雜質(zhì)對細胞狀態(tài)的影響:降低慢病毒對細胞的毒性
2.  調(diào)整細胞狀態(tài),感染時使用對數(shù)期的細胞:增加細胞膜的流動性
3.  降低感染時血清濃度,使用無血清/低血清的培養(yǎng)基:降低血清蛋白對病毒外殼蛋白的封閉
4.  離心法,感染時將細胞培養(yǎng)板密封,用平角轉(zhuǎn)子離心機1000g離心1h,再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng):增加慢病毒與細胞的接觸幾率,但對細胞有一定的機械損傷,儀器要求高
5.  感染時加入Rentronectin等纖粘蛋白:增加慢病毒與細胞接觸幾率,但會影響細胞的貼壁狀態(tài)
6.  使用傳統(tǒng)的助感染試劑,如Polybrene:中和細胞膜和病毒粒子之間的電荷排斥,但Polybrene本身就具有細胞毒性,部分細胞對Polybrene敏感,容易導(dǎo)致細胞狀態(tài)變差、形態(tài)發(fā)生變化、甚至死亡。
7.  使用相比Polybrene,可顯著提高細胞感染效率,且對細胞毒性極低,更適合敏感細胞使用
 
三、特殊細胞慢病毒感染注意事項

1. 懸浮細胞
    對于懸浮細胞,可采用離心感染方法提高感染效率。如將細胞培養(yǎng)板密封后,用平角轉(zhuǎn)子離心機1000g離心1h,再放回培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)。
 
2. 極難感染的細胞
    對于極難感染的細胞,可采用多次感染的方法,即感染一次后,重新加入新鮮病毒再次感染,可顯著提升感染效率。但需要注意調(diào)整兩次感染間細胞狀態(tài)。
 
3. 傳代能力較差的原代細胞、非分裂細胞

    原代細胞:由于細胞增長緩慢,可以在接種時提高匯合度到50%~60%,確保在感染后4天時細胞匯合度達到90%~100%;
    非分裂細胞:如神經(jīng)元細胞,接種后不再增殖,需要按照100%的匯合度進行接種。 

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